El ooquiste es la forma infectante, el contagio es oral, se produce principalmente al ingerir agua contaminada. También tienen su papel contagioso la vía ambiental fecal y de los alimentos, el contacto directo con heces y fómites y las aguas de duchas y aerosoles refrigerantes.

Los ooquistes tienen una sobrevivencia importante en el medio ambiente y son resistentes a la cloración y demás agentes oxidantes de potabilización del agua de consumo.

La Criptosporidiosis es un problema endémico en muchas ganaderías lecheras.

La balsa de almacenamiento de agua es el reservorio principal en algunas ocasiones. Según su localización, la contaminación de la balsa es continua y permanente, la originan principalmente los ooquistes del polvo ambiental, la descontaminación es utópica. En estos casos, la presentación de la enfermedad es inevitable incluso en aguas tratadas con agentes oxidantes.

Se ha informado la presentación de brotes epidémicos de Criptosporidiosis en diversos lugares de España en los que se ha podido comprobar la contaminación del suministro público de agua.  En muchas legislaciones se está incorporando la obligatoriedad de su análisis en el control rutinario de las aguas de red. Las pruebas admitidas son dificultosas, exigen muestreos de volumen muy elevado (hasta 2000 L) y procedimientos analíticos complejos y costosos.

OvisLab ha puesto a punto una prueba molecular de detección de Criptosporidios en aguas de consumo ganadero. Esta técnica tiene sensibilidad suficiente para detectar los niveles de contaminación esperables en el agua de las balsas de granjas con presentación endémica de la enfermedad,  aunque no está validada para aguas de redes públicas.

El volumen de muestra requerido por el laboratorio es de 50 L.

Los ooquistes son sensibles a la luz ultravioleta, la irradiación (desde lactación hasta entrada en recría) del agua contaminada con lámparas de este tipo suele ser una recomendación eficaz para esta problemática.

La presión de infección se reduce, la exposición ambiental persiste, pero es más asumible y el desarrollo de inmunidad adaptativa específica controla el patógeno. También mejoran la integridad intestinal, la inmunidad natural inespecífica y la sanidad general en cría y recría.

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Tradicionalmente, estos estudios se han venido realizando en cerdos terminados.

Por diversas razones ha aumentado el interés actual de estas pruebas:

• La sobreutilización de niveles de Ca en primeras edades,
• El ajuste de incorporación de P,
• El incremento de la utilización de fitasas,
• La problemática de cojeras en recría de futuras reproductoras y en cerdas adultas y
• La presentación esporádica de fracturas espontaneas de fémur en cerdos semiterminados.

En el matadero se muestrean manos de la extremidad anterior izquierda cortadas a nivel del carpo y se envían refrigeradas al laboratorio. Para optimizar nuestro procedimiento, pedimos muestreos de 9 manos o de múltiplos de este número en cada grupo estudiado.

Resulta muy útil comunicar al laboratorio el peso individual de cada canal, que se correlaciona con el PNH y se trata en el informe de resultados.

El método que utilizamos (PNT-GTE-002) se fundamenta en referencias bibliográficas que hemos adaptado y validado en nuestro laboratorio.

Diseccionamos el M3 y determinamos su PNH y CT. A partir del histórico de nuestra base de datos realizamos un tratamiento y valoración estadística de los huesos analizados que informamos en diversos formatos según las preferencias indicadas.

Las muestras idóneas de manos de la extremidad anterior izquierda de animales vivos, cojos y representativos se toman puntualmente al realizar sacrificios eutanásicos en granja; se congelan hasta disponer de un número suficiente que optimice su envío al laboratorio.

También disponemos de pruebas complementarias de biomarcadores de osificación en muestras de suero, que complementan el estudio, especialmente en recrías de futuras reproductoras con historia o riesgo de osteocondrosis.

Ca, P, Vitamina D, Calcitonina, Parathormona, Fosfatasa alcalina, Osteocalcina, CTx-I, CTx-II…

Recomendamos pruebas de campo comparativas porque mejoran la utilidad de estos estudios.

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Un estudio de secuenciación realizado en España por Zoetis (2021-2022) ha informado 61 casos de PCV2d sobre un total de 64 secuencias de PCV2 estudiadas. PCV2d es el genotipo con mayor prevalencia hoy en día, inicialmente lo fueron el PCV2a y más tarde el PCV2b.

PCV2d es el anteriormente denominado PCV2b mutante, la homología entre ambos es importante.

Las causas de evolución de la prevalencia de los distintos genotipos no están demostradas ni existe consenso hipotético sobre ello entre los especialistas, algunos argumentan que puede deberse a la presión inmune producida por la generalización de la vacunación PCV2a y también a la selección natural de genotipos que se produce en un escenario general de inmunidad muy elevada provocado por la eficacia de la vacunación masiva PCV2a (>85% de los cerdos terminados).

Quizás podría esperarse una mayor prevalencia PCV2a-b en poblaciones no vacunadas.

La mayoría de las vacunas comerciales frente a PCV2 están producidas con el genotipo PCV2a. La primera se comercializó en 2004 (CircoVac^®, Merial).

La evolución genética del PCV2 ha generado un debate sobre la conveniencia de la renovación de las vacunas actuales,  así lo recomiendan expertos reconocidos y el principio de mejora continua.

Según encuestas profesionales realizadas a veterinarios de campo, en los últimos tiempos se ha producido un aumento de casos de fracaso vacunal. También se han notificado brotes por PCV2d asociados a fallos vacunales PCV2a.

La homología entre genotipos es buena en la replicasa,  las diferencias se dan en la cápside, donde la similitud entre PCV2a y PCV2b-d es del 91% y del 95% entre PCV2b y PCV2d.

El uso de vacunas que incluyan genotipos PCV2a-b tiene una cobertura inmunitaria más amplia y generalista PCV2a-b-d que la que ofrecen las vacunas monovalentes tradicionales PCV2a.

Más allá de la investigación, el genotipado del PCV2 presenta cada día mayor interés diagnóstico. Para evitar el secuenciado, el sentido práctico ha promovido el desarrollo de pruebas Real Time PCR de genotipado PCV2a-b-d que ya están disponibles.

PCV2a, PCV2b y PCV2d parecen las dianas más convenientes. Las dos primeras por perspectiva general e histórica y por su supuesta alta prevalencia en poblaciones no vacunadas. PCV2d por ser la de mayor prevalencia en el momento actual y por su especial interés para la prescripción vacunal (nuevas vacunas polivalentes, futura disponibilidad de monovalentes PCV2d  ya existentes en USA  y  desarrollos en investigación MLV PCV2d).

Esta prueba se realiza en material genético que previamente ha sido analizado para PCV2 con resultado hallado POS (tejidos con carga viral PCV2 elevada o una muestra idónea escogida entre las de un seroperfil interpretado POS).

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